Скрининг возбудителей гельминтозов, расширенный: острица, трематоды, кошачья двуустка, аскариды, широкий лентец, определение ДНК в кале

Синонимы: Анализ кала на гельминтов методом ПЦР.

Helmo-screen of helminthiasis (enterobiasis, ascariasis, diphyllobothriasis, opisthorchiasis, trematodis), PCR; Screening helminthiasis pathogens. Extended: Еnterobius vermicularis, Trematoda spp., Opisthorchis felineus, Ascaris spp., Diphyllobothrium spp., PCR, Fecal.

Краткое описание исследования «Скрининг возбудителей гельминтозов, расширенный: острица, трематоды, кошачья двуустка, аскариды, широкий лентец, определение ДНК в кале»

Распространенность гельминтных инфекций достаточно высока. Гельминтозы способствуют более частому возникновению соматических и обострению хронических заболеваний, оказывая многостороннее отрицательное воздействие на организм хозяина. Гельминты могут вызывать значительные повреждения в организме человека и даже приводить к смерти.

Инфекции, вызываемые гельминтами, часто клинически бессимптомны, но могут быть связаны с эозинофилией и/или длительными желудочно-кишечными симптомами.

Лабораторные методы диагностики

Существующая диагностика гельминтозов, основанная на микроскопическом исследовании образцов кала человека на наличие яиц паразитов, имеет ряд недостатков, в частности, недостаточно высокую чувствительность, особенно на ранних стадиях развития паразита. Поэтому своевременная верификация диагноза требует разработки и внедрения новых молекулярно-биологических методов исследования, таких как ПЦР и MALDI–TOFMS.

Метод ПЦР:

• позволяет обнаружить ДНК паразитов за один цикл;
• обеспечивает высокую специфичность и чувствительность анализа, существенно сокращая время его проведения;
• позволят провести видовую дифференцировку возбудителей даже на ранних стадиях болезни.

Точность ПЦР-анализа при обнаружении гельминтов в сравнении с микроскопией варьирует от 91% до 100% и позволяет выявлять многих паразитов, за исключением нематод (ложноотрицательные результаты возможны до 20% случаев).

Использование высокочувствительного, быстрого и масштабируемого метода ПЦР может иметь важное значение:

• в диагностике геогельминтозов;
• в оценке интенсивности инфекции;
• в мониторинге эффективности лечения.

Аналитические показатели:

• определяемый фрагмент – специфичный участок ДНК;
• специфичность определения – 100%;
• чувствительность определения – 1,2х10^3 копий/мл исходного образца.

При обнаружении пациентом в фекалиях фрагментов плоских червей или особей круглых червей для их идентификации необходимо обращаться в региональный Центр эпидемиологии и гигиены или в инфекционную больницу.

С какой целью выполняют исследование

Молекулярно-генетические исследования (в т. ч. ПЦР-метод), выявляющие специфические фрагменты ДНК возбудителей в биоматериале, входят в стандартные схемы диагностики гельминтозов и позволяют быстро и эффективно верифицировать возбудителей этих заболеваний.

Что следует учесть при выполнении исследования

Нарушение правил подготовки к исследованию может повлиять на результаты тестов.

Литература

1. Клинические рекомендации. Аскаридоз. МЗ РФ. – 2025.
2. Лабораторная диагностика гельминтозов и протозоозов: Методические указания. - М.: ФБУЗ «Федеральный центр гигиены и эпидемиологии» Роспотребнадзора. - 154 с.
3. Методические рекомендации МР 3.1.0409-25 "Эпидемиологический надзор за энтеробиозом" (утв. Федеральной службой по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека 29 декабря 2025 г.).
4. Мусыргалина Ф. Ф. Медицинская паразитология: учеб. пособие //Уфа: Изд-во ФГБЩУ ВО БГМУ Минздрав России. – 2018. – С. 279.
5. Ющук Н. Д., Венгеров Ю. Я. Инфекционные болезни: национальное руководство. 3-е издание. – 2021.
6. Autier B. et al. Comparison of three commercial multiplex PCR assays for the diagnosis of intestinal protozoa //Parasite. – 2018. – Т. 25.
7. Autier B., Gangneux J. P., Robert-Gangneux F. Evaluation of the Allplex™ GI-Helminth (I) Assay, the first marketed multiplex PCR for helminth diagnosis //Parasite. – 2021. – Т. 28.
8. Keller L. et al. Performance of the Kato-Katz method and real time polymerase chain reaction for the diagnosis of soil-transmitted helminthiasis in the framework of a randomised controlled trial: treatment efficacy and day-to-day variation //Parasites & vectors. – 2020. – Т. 13. – №. 1. – С. 1-12.

Правила подготовки к исследованию

Кал должен быть свежесобранным.

Кал собирают в одноразовый контейнер с завинчивающейся крышкой и ложечкой (его получают в любом медицинском офисе под залог) в количестве не более 1/3 объема контейнера.

Материал доставляют в медицинский офис в день сбора.

На контейнере необходимо указать фамилию, инициалы, дату рождения пациента, дату и время сбора материала, запись должна быть сделана разборчивым почерком.

В направительном бланке обязательно должен быть указан диагноз и дата начала заболевания, сведения о приёме антибиотиков. При взятии материала необходимо соблюдать стерильность.

Материал после окончания исследования в лаборатории не хранится.

С инструкцией по сбору материала можно ознакомиться здесь.

Литература

1. Клинические рекомендации. Аскаридоз. МЗ РФ. – 2025.
2. Лабораторная диагностика гельминтозов и протозоозов: Методические указания. - М.: ФБУЗ «Федеральный центр гигиены и эпидемиологии» Роспотребнадзора. - 154 с.
3. Методические рекомендации МР 3.1.0409-25 "Эпидемиологический надзор за энтеробиозом" (утв. Федеральной службой по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека 29 декабря 2025 г.).
4. Мусыргалина Ф. Ф. Медицинская паразитология: учеб. пособие //Уфа: Изд-во ФГБЩУ ВО БГМУ Минздрав России. – 2018. – С. 279.
5. Ющук Н. Д., Венгеров Ю. Я. Инфекционные болезни: национальное руководство. 3-е издание. – 2021.
6. Autier B. et al. Comparison of three commercial multiplex PCR assays for the diagnosis of intestinal protozoa //Parasite. – 2018. – Т. 25.
7. Autier B., Gangneux J. P., Robert-Gangneux F. Evaluation of the Allplex™ GI-Helminth (I) Assay, the first marketed multiplex PCR for helminth diagnosis //Parasite. – 2021. – Т. 28.
8. Keller L. et al. Performance of the Kato-Katz method and real time polymerase chain reaction for the diagnosis of soil-transmitted helminthiasis in the framework of a randomised controlled trial: treatment efficacy and day-to-day variation //Parasites & vectors. – 2020. – Т. 13. – №. 1. – С. 1-12.

Показания для анализа «Скрининг возбудителей гельминтозов, расширенный: острица, трематоды, кошачья двуустка, аскариды, широкий лентец, определение ДНК в кале»:

• подозрение на инвазию Enterobius vermicularis, Trematoda spp., Opisthorchis felineus, Ascaris spp., Diphyllobothrium spp.

Литература

1. Клинические рекомендации. Аскаридоз. МЗ РФ. – 2025.
2. Лабораторная диагностика гельминтозов и протозоозов: Методические указания. - М.: ФБУЗ «Федеральный центр гигиены и эпидемиологии» Роспотребнадзора. - 154 с.
3. Методические рекомендации МР 3.1.0409-25 "Эпидемиологический надзор за энтеробиозом" (утв. Федеральной службой по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека 29 декабря 2025 г.).
4. Мусыргалина Ф. Ф. Медицинская паразитология: учеб. пособие //Уфа: Изд-во ФГБЩУ ВО БГМУ Минздрав России. – 2018. – С. 279.
5. Ющук Н. Д., Венгеров Ю. Я. Инфекционные болезни: национальное руководство. 3-е издание. – 2021.
6. Autier B. et al. Comparison of three commercial multiplex PCR assays for the diagnosis of intestinal protozoa //Parasite. – 2018. – Т. 25.
7. Autier B., Gangneux J. P., Robert-Gangneux F. Evaluation of the Allplex™ GI-Helminth (I) Assay, the first marketed multiplex PCR for helminth diagnosis //Parasite. – 2021. – Т. 28.
8. Keller L. et al. Performance of the Kato-Katz method and real time polymerase chain reaction for the diagnosis of soil-transmitted helminthiasis in the framework of a randomised controlled trial: treatment efficacy and day-to-day variation //Parasites & vectors. – 2020. – Т. 13. – №. 1. – С. 1-12.

Интерпретация результатов исследования содержит информацию для лечащего врача и не является диагнозом. Информацию из этого раздела нельзя использовать для самодиагностики и самолечения. Точный диагноз ставит врач, используя как результаты данного обследования, так и нужную информацию из других источников: анамнеза, результатов других обследований и т.д.

Единицы измерения: тест качественный.

Референсные значения: не обнаружено.

Формат представления результата

Результат выдается в терминах «обнаружено» или «не обнаружено»:

• по Enterobius vermicularis;
• по Trematoda spp.;
• по Opisthorchis felineus;
• по Ascaris spp.;
• по Diphyllobothrium spp.

Интерпретация результатов исследования «Скрининг возбудителей гельминтозов, расширенный: острица, трематоды, кошачья двуустка, аскариды, широкий лентец, определение ДНК в кале»

Обнаружено

В анализируемом образце биологического материала найден фрагмент ДНК, специфичный для Enterobius vermicularis, инфицирование Enterobius vermicularis.

В анализируемом образце биологического материала найден фрагмент ДНК, специфичный для Trematoda spp., инфицирование Trematoda spp.

В анализируемом образце биологического материала найден фрагмент ДНК, специфичный для Opisthorchis felineus, инфицирование Opisthorchis felineus.

В анализируемом образце биологического материала найден фрагмент ДНК, специфичный для Ascaris spp., инфицирование Ascaris spp.

В анализируемом образце биологического материала найден фрагмент ДНК, специфичный для Diphyllobothrium spp., инфицирование Diphyllobothrium spp.

Инфекция, вызванная соответствующим возбудителем.

Носительство возбудителя инфекции.

Не обнаружено

В анализируемом образце биологического материала не обнаружено фрагментов ДНК, специфичных для Enterobius vermicularis, или концентрация возбудителя в образце ниже границы чувствительности метода.

В анализируемом образце биологического материала не обнаружено фрагментов ДНК, специфичных для Trematoda spp., или концентрация возбудителя в образце ниже границы чувствительности метода.

В анализируемом образце биологического материала не обнаружено фрагментов ДНК, специфичных для Opisthorchis felineus. или концентрация возбудителя в образце ниже границы чувствительности метода.

В анализируемом образце биологического материала не обнаружено фрагментов ДНК, специфичных для Ascaris spp., или концентрация возбудителя в образце ниже границы чувствительности метода.

В анализируемом образце биологического материала не обнаружено фрагментов ДНК, специфичных для Diphyllobothrium spp., или концентрация возбудителя в образце ниже границы чувствительности метода.

Литература

1. Клинические рекомендации. Аскаридоз. МЗ РФ. – 2025.
2. Лабораторная диагностика гельминтозов и протозоозов: Методические указания. - М.: ФБУЗ «Федеральный центр гигиены и эпидемиологии» Роспотребнадзора. - 154 с.
3. Методические рекомендации МР 3.1.0409-25 "Эпидемиологический надзор за энтеробиозом" (утв. Федеральной службой по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека 29 декабря 2025 г.).
4. Мусыргалина Ф. Ф. Медицинская паразитология: учеб. пособие //Уфа: Изд-во ФГБЩУ ВО БГМУ Минздрав России. – 2018. – С. 279.
5. Ющук Н. Д., Венгеров Ю. Я. Инфекционные болезни: национальное руководство. 3-е издание. – 2021.
6. Autier B. et al. Comparison of three commercial multiplex PCR assays for the diagnosis of intestinal protozoa //Parasite. – 2018. – Т. 25.
7. Autier B., Gangneux J. P., Robert-Gangneux F. Evaluation of the Allplex™ GI-Helminth (I) Assay, the first marketed multiplex PCR for helminth diagnosis //Parasite. – 2021. – Т. 28.
8. Keller L. et al. Performance of the Kato-Katz method and real time polymerase chain reaction for the diagnosis of soil-transmitted helminthiasis in the framework of a randomised controlled trial: treatment efficacy and day-to-day variation //Parasites & vectors. – 2020. – Т. 13. – №. 1. – С. 1-12.